Inseminação Artificial em Éguas

Mapa do manejo reprodutivo equino

O manejo reprodutivo equino parte de um princípio central: a variabilidade da égua exige acompanhamento individualizado. Clima, luminosidade, dinâmica folicular e resposta hormonal influenciam o cio e o momento da ovulação, tornando essencial integrar avaliação clínica, ultrassonografia e planejamento da inseminação. A decisão também depende da viabilidade dos gametas, da qualidade e logística do sêmen e da fertilidade do garanhão. Ao longo da aula, você acompanhará como reconhecer estruturas e sinais reprodutivos, realizar procedimentos com segurança, direcionar o aplicador e prevenir ou tratar complicações, como gestações gemelares, endometrite, aborto e infecção uterina. A fisiologia organiza cada etapa, mas a observação contínua orienta a conduta.

Fisiologia orienta o momento inseminante

A aplicação prática da fisiologia reprodutiva é essencial para determinar o momento adequado da inseminação artificial. A duração do cio da égua é variável e não se repete necessariamente entre ciclos; o cio pode durar cinco, sete ou dez dias, dependendo principalmente das condições climáticas, da temperatura e da luminosidade. Enquanto a inseminação de bovinos pode ser programada com maior previsibilidade, a égua exige acompanhamento mais próximo.

Por isso, a palpação diária da égua pode ser necessária para determinar o momento adequado da inseminação artificial. Diferentemente da vaca, na égua a constatação de cio pela manhã não permite prever com exatidão imediata o momento exato em que a inseminação deverá ser realizada. Na égua, os ciclos estrais não ocorrem obrigatoriamente em intervalos de dias fixos como na vaca, havendo variação no momento da ovulação.

Clima e luz mudam o ciclo

As variações na temperatura e na luminosidade interferem diretamente na dinâmica folicular e podem modificar o comprimento do cio e a velocidade de ovulação. Períodos prolongados sem luminosidade, seguidos por semanas mais quentes e ensolaradas, podem modificar o comportamento reprodutivo das éguas.

Durante períodos com menor luminosidade natural ( fotoperíodo curto ), as éguas permanecem em anestro sazonal e não respondem reprodutivamente. Assim, animais submetidos a condições climáticas distintas em semanas consecutivas podem apresentar diferenças no comprimento do cio, no crescimento folicular e no momento da ovulação. Essas particularidades devem ser consideradas para evitar exames desnecessários e estabelecer um programa eficiente de acompanhamento.

Limiares foliculares e monitoramento

Na égua, sinais de estro e abertura da cérvix podem aparecer a partir de um folículo com 20 mm, mas a condição ovulatória ocorre a partir de aproximadamente 35 mm. O folículo cresce geralmente 3 a 5 mm por dia, e o acompanhamento dessa dinâmica é obrigatório para a inseminação. O objetivo é atingir 35 mm antes de proceder à indução e à inseminação.

Na ultrassonografia, a ausência da linha de reação das células da granulosa indica que a ovulação ainda está mais distante.

Indução hormonal e janela ovulatória

A indução hormonal organiza a janela prevista para a ovulação.

1. Etapa: Controle a dinâmica folicular com prostaglandina e um fármaco indutor de ovulação, como a gonadotrofina coriônica humana (hCG).
2. Etapa: Entre os indutores, utilize a gonadotrofina coriônica humana (hCG) ou o Sincrorrelin; ambos são empregados para induzir a ovulação em éguas.
3. Etapa: Após a indução hormonal, espere a ovulação entre 24 e 36 horas.

Luteólise, exceções e sinais ultrassonográficos

A prostaglandina promove a lise do corpo lúteo, mas essa estrutura só responde à sua ação a partir do quinto dia após a ovulação. Depois de 48 horas da aplicação, o corpo lúteo deixa de ser visualizado na ultrassonografia. Se não houver corpo lúteo e o folículo for pequeno, não se faz intervenção imediata; aguarda se uma reavaliação.

Existem protocolos com progesterona ou dispositivo intravaginal CIDR por 7 a 8 dias, associados a estrógeno e prostaglandina. Entretanto, a progesterona não é utilizada para controlar a dinâmica folicular ovariana em éguas.

Na ultrassonografia, o destacamento com aumento de perfusão próximo às células da granulosa indica proximidade da ovulação.

FSH cresce; LH amadurece e ovula

O crescimento folicular está relacionado principalmente à elevação do FSH, enquanto o LH participa da maturação final do folículo e favorece a ovulação. O hormônio luteinizante (LH) atua para finalizar o crescimento folicular e favorecer a ocorrência da ovulação. O aumento do hormônio folículo estimulante (FSH) é responsável por promover o crescimento folicular.

Antes de aproximadamente 35 mm, o folículo ainda não apresenta resposta ovulatória adequada ao LH. Por isso, a indução da ovulação em uma égua cujo folículo mede 30 mm pode não produzir a resposta esperada, e a capacidade de responder ao estímulo ovulatório deve ser considerada antes da utilização de indutores.

Comportamento auxilia confirmar ovulação

A égua frequentemente deixa de aceitar o garanhão entre 24 e 48 horas após a ovulação. Essa recusa, também chamada de rufiamento, serve como informação auxiliar para confirmar que a ovulação ocorreu.

Se a indução for realizada no domingo à tarde, espera se que a ovulação ocorra aproximadamente entre a manhã de segunda feira e o período subsequente, dependendo da resposta individual. Assim, a recusa da égua ao garanhão nos dias seguintes, associada ao acompanhamento folicular, auxilia na determinação do momento provável da ovulação.

A fase folicular exige acompanhamento

A fase folicular é altamente variável e inconsistente. Por isso, a duração do cio e o momento exato da ovulação são difíceis de determinar sem acompanhamento.

O manejo reprodutivo da égua exige controle ultrassonográfico e avaliação clínica frequentes. A programação deve aproveitar a fisiologia folicular para reduzir o número de visitas, sem pressupor que todos os ciclos seguirão o mesmo padrão.

Viabilidade define a janela reprodutiva

A viabilidade dos gametas orienta a janela reprodutiva. A viabilidade do oócito é considerada, em geral, de aproximadamente 12 horas, embora alguns autores considerem até 24 horas. Após a ovulação, a viabilidade do oócito perdura por cerca de 12 horas.

Há relatos de persistência por períodos maiores, inclusive de até 72 horas ou sete dias, mas esses valores não devem ser utilizados como padrão de segurança. O sêmen fresco no trato reprodutivo da fêmea pode permanecer viável, em média, por 48 a 72 horas. Para fins de segurança, utiliza se frequentemente o intervalo de 48 horas.

Inseminar antes da ovulação prevista

A taxa de recuperação embrionária diminui à medida que aumenta o intervalo entre a ovulação e a cobertura ou a inseminação. Na égua, a inseminação deve ser realizada pouco antes da ovulação prevista, para assegurar taxas adequadas de fertilização e permitir a capacitação espermática sem degradação excessiva dos espermatozoides.

Quando realizada muito antes, parte dos espermatozoides pode morrer antes da ovulação. Quando realizada muito próxima ou depois da ovulação, pode não haver tempo suficiente para a capacitação. Na vaca, se a fêmea manifesta cio pela manhã, a inseminação artificial é realizada à tarde; se manifesta cio à tarde, a inseminação é realizada na manhã seguinte.

Capacitação prepara o espermatozoide

Para alinhar o trânsito espermático à ovulação, recomenda se realizar a inseminação aproximadamente 12 horas antes da ovulação esperada. Em mamíferos de forma geral, esse intervalo busca alcançar a melhor resposta reprodutiva e conciliar o tempo necessário à capacitação com a viabilidade do oócito.

A célula espermática leva, em média, cerca de oito horas após ser depositada no trato reprodutivo da fêmea para atingir o corno uterino. Os espermatozoides depositados no trato reprodutivo da fêmea levam cerca de oito horas para alcançar a região da tuba uterina. Durante esse trânsito, passam por modificações necessárias à fecundação, incluindo a capacitação espermática e a reação acrossômica, processos essenciais para a fertilização.

Inseminar cerca de 12 horas antes do momento previsto da ovulação proporciona maiores taxas de prenhez, ao passo que a inseminação tardia ou muito próxima da ovulação gera prejuízo reprodutivo.

Fertilidade do garanhão também importa

Na investigação de falhas reprodutivas, a fertilidade do macho deve ser avaliada. A avaliação do garanhão costuma ser mais simples e rápida do que a investigação completa da fêmea, permitindo identificar alterações corrigíveis e evitar que toda a responsabilidade seja atribuída à égua.

A origem do problema pode estar na concentração espermática, na motilidade, na morfologia, no plasma seminal ou na produção testicular. Existem suplementações nutricionais administradas ao garanhão que interferem na concentração espermática, na motilidade ou na qualidade seminal geral. O fornecimento de uma alimentação mais energética pode ser utilizado para elevar a qualidade do sêmen e a concentração espermática no garanhão.

A confirmação de que alterações na qualidade do plasma seminal estão prejudicando o sêmen equino requer uma avaliação laboratorial ampla e especializada. Na reprodução humana assistida, a avaliação clínica do homem é a primeira conduta realizada quando um casal busca auxílio para infertilidade.

Coleta farmacológica depende da resposta

A coleta farmacológica oferece uma alternativa quando o garanhão não consegue montar, mas exige uma sequência condicionada à resposta e ao controle da sedação.

1. Etapa: Identifique a indicação: garanhões impossibilitados de montar, inclusive por afecções locomotoras como laminite, podem ser submetidos a protocolos de coleta farmacológica.
2. Etapa: Administre o antidepressivo na ração cerca de 4 horas antes do procedimento.
3. Etapa: Prepare a sequência: administre posteriormente ocitocina e sedativo, mantendo uma égua presente para estimular o garanhão.
4. Etapa: Combine a ocitocina com um fármaco sedativo, como a detomidina.
5. Etapa: Avalie a resposta, lembrando que ela não é garantida; em experiências mencionadas, aproximadamente metade das tentativas resultou em ejaculação.
6. Etapa: Monitore a sedação: doses excessivas podem provocar depressão intensa, abaixamento da cabeça e relaxamento excessivo.
7. Etapa: Reconheça a sedação excessiva: o abaixamento da cabeça e o relaxamento do lábio inferior indicam esse efeito após a administração do sedativo.
8. Etapa: Reduza a dose em tentativas subsequentes quando houver depressão ou relaxamento excessivo.

Frequência de coleta preserva concentração

A coleta do garanhão costuma ser realizada duas ou três vezes por semana, embora outros intervalos possam ser utilizados. Coletas diárias podem reduzir a concentração espermática. Isso ocorre porque a produção e o trânsito dos espermatozoides no epidídimo são processos contínuos.

Apenas os espermatozoides que completaram o trânsito epididimário estão disponíveis para ejaculação. Portanto, a estimulação não acelera a formação ou a chegada dos espermatozoides ao epidídimo; a frequência de coleta precisa respeitar esse processo fisiológico.

Envio exige reserva e planejamento

Quando o sêmen é enviado de outro haras, é necessário conhecer previamente os dias de coleta e organizar a solicitação com antecedência. Muitos centros realizam coletas apenas três vezes por semana, por exemplo, às segundas, quartas e sextas feiras ou às terças, quintas e sábados.

Essa disponibilidade pode limitar o dia da inseminação. Por isso, garanhões com sêmen de baixa qualidade ou com grande procura podem exigir reserva com uma semana ou uma semana e meia de antecedência.

Processamento e faixa adequada

A centrifugação do sêmen equino descarta quase todo o plasma seminal. Quando realizada em alta velocidade, a centrifugação garante a ausência de células espermáticas no sobrenadante de plasma seminal. Esse processo é usado para ajustar a concentração do sêmen destinado à inseminação artificial.

Para o envio de sêmen resfriado, a faixa ideal é de 25 a 50 milhões de espermatozoides por mL. A dose não deve ficar abaixo de 25 nem acima de 50 milhões por mL, para não comprometer sua eficácia.

Radicais livres e viabilidade

Os espermatozoides necessitam de uma produção basal de radicais livres para realizar a capacitação espermática. Assim, sua presença participa de processos fisiológicos, mas sua presença em excesso é prejudicial. O excesso de radicais livres prejudica a integridade celular espermática, aumenta a deterioração e pode causar a morte dos espermatozoides.

Concentrações espermáticas abaixo de 25 milhões por mL geram excesso de diluente, diluindo excessivamente os radicais livres e impedindo a ação mínima necessária para a capacitação espermática. No sêmen resfriado, espera se que aproximadamente metade dos espermatozoides enviados sofra mortalidade entre 24 e 48 horas, no intervalo de 24 a 48 horas.

Intervenções no garanhão

Alterações na concentração espermática e na patologia morfológica dos espermatozoides exigem interferência direta na espermatogênese nos testículos do garanhão. O estímulo do eixo GH/IGF promove aumento da testosterona, aumento da concentração espermática e melhora da qualidade morfológica dos espermatozoides. A elevação dos níveis de IGF acarreta uma resposta concomitante de aumento nos níveis de testosterona.

O aumento da carga de exercícios físicos favorece a elevação dos níveis de testosterona no cavalo. A modificação direcionada da dieta alimentar é uma estratégia para elevar os níveis de testosterona no garanhão. A testosterona é o hormônio que determina a melhoria da qualidade morfológica e da concentração espermática no garanhão. A ação do IGF implica a melhora tanto na concentração espermática quanto na qualidade morfológica dos espermatozoides, enquanto a suplementação proteica é uma intervenção empregada para atuar diretamente sobre a produção espermática testicular.

Transporte reduz a dose viável

No sêmen resfriado, o tempo de transporte reduz a quantidade de células viáveis; por isso, a concentração enviada precisa considerar essa perda.

A embalagem deve acompanhar os dados do ejaculado e do responsável pelo envio.

Sêmen fresco e congelado diferem

A inseminação artificial em equinos pode ser realizada utilizando sêmen congelado ou sêmen fresco. Na modalidade convencional em éguas, a dose apresentada para o sêmen congelado é de 100 a 200 milhões de espermatozoides.

Qualidade seminal exige leitura contextual

A qualidade seminal deve ser interpretada conforme a idade do garanhão, a concentração, a motilidade e a morfologia. Um animal jovem, um animal senil e um animal com alterações patológicas podem responder de maneira diferente à suplementação.

A baixa concentração, a alta proporção de alterações morfológicas e a baixa motilidade exigem abordagens distintas. Também é necessário considerar se o problema se origina no plasma seminal ou no testículo.

Plasma seminal pode ser substituído

Quando se suspeita de efeito prejudicial do plasma seminal, pode se remover esse plasma por centrifugação e substituí lo por plasma seminal proveniente de um garanhão de boa qualidade. Para isso, centrifuga se o sêmen do animal doador em alta velocidade, retira se o sobrenadante e utiliza se o material para substituir o plasma seminal do garanhão com baixa qualidade.

A alimentação e determinados suplementos também podem influenciar a qualidade seminal, mas a resposta pode demorar aproximadamente 60 dias.

Hormônios sustentam produção espermática

A concentração e a morfologia espermáticas estão relacionadas à função testicular e à ação hormonal. A testosterona participa da produção espermática, enquanto o IGF atua diretamente, nos testículos, sobre as células de Leydig e as células de Sertoli.

A alimentação direcionada ao aumento de carboidratos pode elevar glicose, insulina e IGF. Também foi mencionada a utilização de hormônio do crescimento após o fechamento das epífises, com o objetivo de aumentar IGF, concentração espermática e qualidade morfológica. A melhora da libido, da concentração e da morfologia foi atribuída à ação conjunta do hormônio do crescimento, do IGF e da testosterona.

Porte corporal altera a profundidade

A profundidade necessária para alcançar os ovários varia conforme o tamanho e a conformação da égua. Em animais de grande porte, como algumas éguas Brasileiro de Hipismo e Puro Sangue Inglês, pode ser necessária a introdução de todo o braço; em animais menores, a palpação tende a ser mais acessível. Éguas de esporte ou salto dessas raças frequentemente apresentam altura de cernelha entre 1,70 m e 1,80 m.

O apoio também faz diferença: o uso de um banco ou de uma plataforma pode melhorar o apoio e aumentar a profundidade alcançada, especialmente por profissionais de menor estatura. Diferentemente do procedimento em vacas, no qual geralmente não se ultrapassa o punho, a palpação retal na égua exige a introdução do braço inteiro. Na raça Quarto de Milha, a musculatura de garupa muito volumosa cria uma barreira física; além disso, em determinadas éguas, os ovários ficam muito cranialmente e ventralmente, para frente e para baixo, exigindo maior extensão de braço.

Consistência indica proximidade ovulatória

A consistência do folículo pode ser avaliada pela palpação e ajuda a estimar sua proximidade da ovulação. Um folículo ovariano de 20 a 25 mm apresenta consistência tensa, comparável à tensão obtida ao unir o polegar ao dedo mindinho. À medida que a ovulação se aproxima, a tensão diminui.

Essa mudança permite uma comparação tátil progressiva: a pressão entre o dedo médio e o polegar pode corresponder a um folículo próximo da ovulação, possivelmente dentro de 24 horas. Já a pressão entre o dedo indicador e o polegar pode indicar ovulação iminente, possivelmente dentro de 12 horas ou já ocorrida.

Anatomia ovariana limita ovulações duplas

Na égua, a organização ovariana é particular: a região medular do ovário encontra se perifericamente, enquanto o córtex ocupa a região central, diferentemente do que ocorre em outras espécies. Essa conformação direciona o crescimento folicular para a fossa de ovulação, estrutura através da qual as éguas ovulam.

Essa anatomia ajuda a entender a ovulação dupla. A primeira ovulação pode dificultar uma segunda no mesmo ovário, porque o fechamento da fossa pode impedir a saída de outro oócito; por isso, ovulações duplas são mais efetivas quando ocorrem em ovários distintos. Na gestação bovina, o feto ocupa o corno gestacional com pouca expansão para o corno contralateral.

Do ponto de vista do manejo, o manejo reprodutivo em equinos não permite a manutenção de gestações gemelares. A placenta da égua é microcotiledonária (difusa), realizando trocas gasosas e de nutrientes por toda a sua extensão.

Tumor afeta o ovário contralateral

O tumor de células da granulosa na égua causa atrofia do ovário contralateral. Esse achado representa uma alteração ovariana relevante no contexto reprodutivo da égua.

Edema uterino acompanha o cio

Durante o cio, o útero apresenta edema progressivo, classificado em uma, duas ou três cruzes. Três cruzes representam o grau máximo fisiológico geralmente utilizado na avaliação.

O edema pode ultrapassar três cruzes, tornando se mais intenso e irregular; acima desse limite, passa a ser considerado patológico e requer correção. A redução do edema próximo à ovulação é uma informação importante para o acompanhamento.

Regressão do edema antecipa ovulação

O edema pode aumentar de uma para três cruzes e posteriormente regredir para duas cruzes à medida que a ovulação se aproxima. Essa regressão, associada à contração ou à redução do diâmetro folicular, indica que a ovulação pode ocorrer em breve.

Essa diminuição não significa necessariamente perda do cio. Quando o acompanhamento diário demonstra regressão do edema e alteração compatível no folículo, a inseminação pode ser realizada antes da ovulação.

Limpeza eficaz protege o útero

A limpeza da região perineal deve remover fezes e resíduos sem deixar substâncias no trato reprodutivo. A higienização da região perineal da égua faz parte da rotina do manejo reprodutivo.

O uso de clorexidina, iodopovidona ou álcool é encontrado em diferentes recomendações, mas não é considerado indispensável. A preferência descrita é pelo sabão de coco, seguida de enxágue abundante. O sabão deve ser completamente removido, pois resíduos podem ser conduzidos para o útero pelo aplicador e interferir na resposta reprodutiva.

Durante o manejo, aproximar o cavalo de surpresa por trás da égua pode induzir uma resposta de rejeição ou agressividade contra o macho. Mesmo que a égua esteja no cio, uma aproximação inadequada pode assustá la e provocar reações defensivas, como coices. Acidentes com coices frequentemente envolvem cavalos mansos deixados soltos, ao passo que cavalos bravos costumam ser devidamente amarrados.

Remover, enxaguar e secar

Antes da lavagem, deve se retirar manualmente o excesso de fezes. Como a manipulação e a umidade podem estimular a defecação reflexa, essa retirada inicial deve preceder a limpeza, reduzindo o risco de nova eliminação durante o procedimento.

Após a lavagem, a região deve ser bem enxaguada e seca. Uma faixa pode ser utilizada para manter a área protegida. A aplicação de agentes antissépticos deve ser reservada para situações de contaminação que justifiquem maior assepsia.

Orelhas para trás sinalizam perigo

Orelhas completamente achatadas e direcionadas para trás indicam comportamento defensivo e possibilidade de ataque. Quando esse sinal é observado, a aproximação deve ser interrompida, pois A segurança deve prevalecer sobre qualquer tentativa de aproximação imediata. Se o animal permanecer receptivo, a adaptação pode ser realizada gradualmente, por meio da voz e do contato progressivo com a cabeça e o pescoço.

Rufiação observa receptividade progressiva

A rufiação progride do contato inicial até a verificação da receptividade da égua.

1. Etapa: A rufiação da égua deve ser realizada quando estiver prevista dentro do manejo reprodutivo.
2. Etapa: Existem diversas metodologias para realizar a rufiação da égua, incluindo o contato com separação por cerca.
3. Etapa: Durante a rufiação, o rufião normalmente inicia o contato cheirando e mordiscando o pescoço da égua e descendo pela lateral do flanco e costelas.
4. Etapa: No processo de rufiação, o rufião avança para a região do períneo da égua, cheirando e mordiscando para verificar sinais de receptividade.

Sinais clássicos reconhecem o estro

Os sinais clássicos de cio incluem elevação da cauda, abaixamento e abertura dos membros posteriores, eversão do clitóris, contrações da musculatura vulvar e micção. A cauda pode permanecer elevada em posição semelhante a uma bandeira.

Durante o estro, a abertura e o fechamento do clitóris ocorrem associados à micção. Em conjunto, esses sinais auxiliam na identificação do estro e na avaliação da receptividade ao garanhão.

Fecundação direciona a descida embrionária

Na maioria das fêmeas domésticas, o oócito ovulado desloca se em direção ao útero independentemente da fecundação. Na égua, porém, o oócito não fecundado geralmente não é transportado para o útero, pois o transporte uterino está relacionado à fecundação. A ocorrência de um oócito não fecundado no útero é excepcional, embora possa ser observada ocasionalmente.

O embrião equino desce da tuba uterina para o lúmen do útero a partir do sexto dia e meio ao sétimo dia pós ovulação. Na égua, apenas os oócitos fecundados descem para o útero devido a secreções responsáveis pelo estímulo da motilidade ovidutal. Na inseminação artificial de éguas, o padrão reprodutivo esperado é alcançar a prenhez com no máximo duas tentativas de inseminação.

Controle folicular antecede a inseminação

A inseminação exige controle da dinâmica folicular. A utilização de prostaglandina, de um indutor de ovulação, de coleta de sêmen e de avaliação do garanhão deve ser ajustada ao estágio do ciclo.

A decisão depende da presença ou ausência de corpo lúteo, do tamanho do folículo, do edema uterino e da direção do crescimento folicular. A dinâmica folicular ovariana da égua inicia com um folículo pequeno que progride até o estágio pré ovulatório, culminando em ovulação ou regressão.

Limitações do controle folicular

Na égua, o corpo lúteo só se torna responsivo à ação luteolítica da prostaglandina aproximadamente a partir do quinto dia após a ovulação. Esse intervalo é uma particularidade importante do controle reprodutivo e deve ser considerado antes de programar a inseminação.

Diferentemente das vacas, a onda folicular não pode ser sincronizada em éguas apenas com progesterona e estrógeno, devido à dinâmica folicular própria da égua e à grande variação no tamanho dos folículos. O uso isolado de progesterona não inibe necessariamente a onda de crescimento folicular. Por isso, a progesterona não é utilizada como principal instrumento de controle da dinâmica folicular para inseminação em tempo fixo; além disso, sua aplicação injetável pode provocar retração e supressão da dinâmica folicular ovariana.

Durações e suporte gestacional

A duração da ação farmacológica depende da formulação: 5 mL de progesterona injetável conferem efeito por aproximadamente 7 dias, enquanto 10 mL de progesterona injetável de longa ação conferem efeito por 14 dias. Já o progestágeno oral administrado diariamente na ração permite rápida queda das concentrações hormonais e retorno à ciclicidade normal após a interrupção.

Na égua, a progesterona exógena é utilizada rotineiramente para manutenção da gestação até aproximadamente 120 dias. Depois desse período, a síntese de progestágenos de suporte gestacional passa a ser predominantemente placentária, e não ovariana. Como suporte, pode se administrar 10 mL de progesterona de longa ação a cada 14 dias até completar 120 dias de prenhez.

Indução depende do folículo adequado

A indução da ovulação depende da presença de um folículo pré ovulatório adequado: a gonadotrofina coriônica humana apresenta ação a partir de aproximadamente 35 mm. Por isso, o controle deve considerar o diâmetro folicular — seja de 35, 30, 20 ou 15 mm — e a presença ou ausência de corpo lúteo.

Após a aplicação de prostaglandina, ocorre queda sistêmica da progesterona em cerca de 24 horas e lise estrutural do corpo lúteo em aproximadamente 48 horas. Com 48 horas após a administração de prostaglandina, o corpo lúteo já não é visualizado ao exame ultrassonográfico.

Quatro cenários orientam a conduta

A conduta depende da combinação entre corpo lúteo e diâmetro folicular. Uma égua com corpo lúteo e folículo de 35 mm pode receber prostaglandina e ser acompanhada para indução da ovulação. Quando há corpo lúteo, mas o folículo mede 20 mm, é necessário acompanhar seu crescimento antes de induzir.

Na ausência de corpo lúteo, uma égua com folículo de 30 mm pode ser programada para indução conforme a presença de edema e o estágio folicular. Já uma égua sem corpo lúteo e com folículo de 15 mm geralmente não requer intervenção imediata; deve retornar posteriormente para verificar o início do cio e a progressão folicular.

Aplicador segue a anatomia cervical

A via de inseminação depende da anatomia cervical e combina condução manual com direcionamento por via retal.

1. Etapa: Compare a técnica bovina: na inseminação artificial de bovinos, o aplicador é inserido na vagina enquanto a cérvix é sustentada e direcionada por palpação retal.
2. Etapa: Conduza o aplicador na égua: a ausência de uma manipulação transretal equivalente da cérvice exige que o aplicador seja conduzido pela mão até a cérvice.
3. Etapa: Utilize o dedo como guia para a entrada do aplicador.
4. Etapa: Direcione o aplicador após a passagem pela cérvice: a mão retorna ao reto para conduzi lo ao corno uterino correspondente ao ovário que contém o folículo pré ovulatório.

Corno acompanha o ovário dominante

O direcionamento do aplicador acompanha o lado do ovário que apresenta o folículo de 35 mm: Se o folículo de 35 mm estiver no ovário direito, o aplicador deve ser direcionado para o corno uterino direito. Se o folículo estiver no ovário esquerdo, o aplicador deve ser conduzido para o corno esquerdo.

Depois de alcançar o corno correspondente, o aplicador deve avançar o mais cranialmente possível, até o ápice do corno uterino, onde o sêmen será depositado. Na égua, a junção entre o ápice do corno uterino e a tuba uterina é constituída por uma papila anatômica. A presença dessa papila na junção uterotubárica confere proteção anatômica e torna extremamente baixa a ocorrência de infecções na tuba uterina.

Camisa sanitária reduz contaminação

Algumas recomendações indicam o uso de uma camisa sanitária no aplicador. Ao alcançar o corpo da cérvice, a camisa pode ser rasgada e mantida enquanto o aplicador avança, reduzindo o risco de transportar sujeira para o interior do útero.

Depois da passagem do aplicador, a mão pode ser retirada e utilizada pelo reto para direcionar o instrumento ao corno adequado.

Endoscopia reduz a dose inseminante

Na inseminação artificial de éguas guiada por endoscópio, a dose inseminante necessária é reduzida para 1 a 5 milhões de espermatozoides.

Além de reduzir a dose, essa técnica também permite inseminar até 5 éguas utilizando uma única palheta de sêmen.

Sêmen processado pode inflamar o útero

Éguas suscetíveis podem desenvolver inflamação uterina após a cobertura ou a inseminação. A cobertura natural tende a produzir resposta menor porque o grande volume ejaculado contém prostaglandinas em concentração adequada para auxiliar a contratilidade miometrial e a limpeza uterina.

No sêmen resfriado ou congelado, a centrifugação concentra os espermatozoides e remove grande parte do plasma seminal, podendo restar quantidade insuficiente de prostaglandinas para favorecer a limpeza.

Reavaliar após seis a oito horas

A resposta inflamatória deve ser avaliada aproximadamente seis a oito horas após a inseminação. Antes de realizar intervenções intrauterinas, deve se aguardar seis a oito horas após a inseminação, permitindo o transporte espermático.

Quando a reação é discreta, pode se aguardar esse intervalo para permitir a resposta fisiológica e evitar intervenções desnecessárias. Quando a inflamação é intensa ou a égua apresenta histórico de reação pós inseminação, deve se instituir manejo específico para reduzir o acúmulo intrauterino.

Escolha o corticoide pelo tempo

Em éguas com histórico conhecido de inflamação pós inseminação, pode se utilizar terapia anti inflamatória antes da inseminação ou no retorno. A prednisolona foi mencionada como opção de ação mais curta.

Corticoides de ação prolongada, como a dexametasona, podem permanecer ativos por aproximadamente sete a doze dias e produzir efeitos indesejáveis posteriormente. Corticoides como a dexametasona e a betametasona não devem ser utilizados no tratamento preventivo da inflamação pós inseminação em éguas. A escolha deve considerar a duração da ação e o momento do ciclo.

Lavagem combina contração e limpeza

A resposta inflamatória pós inseminação é manejada combinando limpeza uterina e contração controlada. Cada etapa deve respeitar a resposta do útero.

1. Etapa: Identifique a inflamação; quando se identifica inflamação após a inseminação, pode se utilizar lavagem uterina associada à ocitocina e à prostaglandina.
2. Etapa: Administre ecbólicos diante de resposta inflamatória com acúmulo de fluido uterino após a inseminação, indica se a administração de ecbólicos, cuja função no trato reprodutivo da égua é estimular a contração do miométrio para expulsão de secreções.
3. Etapa: Prepare a administração; a conduta descrita inclui aproximadamente 1 mL de cada substância na mesma seringa, totalizando cerca de 10 unidades de ocitocina.
4. Etapa: Use doses maiores com cautela; doses maiores podem ser utilizadas, mas exigem cautela, pois contrações muito intensas podem produzir espasmo e dificultar a eliminação do conteúdo uterino.

Aplicações cessam quando o líquido some

A ocitocina apresenta potência elevada e curta duração, enquanto a prostaglandina apresenta menor potência e duração mais prolongada. Por isso, pode se realizar aplicação pela manhã e à tarde, com nova avaliação no dia seguinte. Quando o líquido uterino desaparece após duas aplicações, o tratamento pode ser interrompido.

A limpeza costuma ser mantida por até três dias após a ovulação como margem de segurança, embora a resposta do corpo lúteo à prostaglandina seja considerada a partir do quinto dia. A prostaglandina e a ocitocina possuem atividade luteolítica sobre o corpo lúteo da égua.

DMSO complementa a lavagem persistente

Caso persista conteúdo uterino após o uso de ecbólicos, indica se realizar lavado uterino com solução de dimetilsulfóxido (DMSO) a 10%. Um exemplo consiste em retirar 100 mL de uma bolsa de 1 litro de solução e acrescentar 100 mL de dimetilsulfóxido. A solução pode permanecer no útero por aproximadamente dez minutos e depois ser removida.

Em seguida, utiliza se solução limpa para retirar qualquer resíduo. Depois, realiza se ultrassonografia e remove se eventual acúmulo remanescente antes de nova aplicação de agente uterotônico.

Aborto exige primeiro avaliar o útero

Após um aborto, a primeira avaliação deve determinar o estado do útero. É preciso verificar se houve eliminação completa do conteúdo, retenção de parte da placenta ou permanência de debris e material degradado.

A retenção de debris não corresponde necessariamente à retenção de placenta, portanto cada situação exige uma conduta específica. A introdução de substâncias em um útero sujo sem tentativa prévia de limpeza pode agravar o problema.

Ecbólico precede lavagem uterina

A limpeza uterina pós abortamento segue uma sequência: primeiro, priorize a remoção do material acumulado; depois, avance para a lavagem quando houver menos debris.

1. Etapa: A primeira medida consiste em tentar remover o conteúdo uterino sem introduzir substâncias desnecessárias.
2. Etapa: A ocitocina pode ser utilizada para promover contração e auxiliar a eliminação de debris maiores.
3. Etapa: No primeiro dia, deve se priorizar a remoção do material acumulado. No primeiro dia de intervenção para limpeza uterina pós abortamento em éguas, o tratamento de escolha é a administração de ecbólicos. Quando há debris, a indicação é a medicação ecbólica.
4. Etapa: Em um útero com presença de debris, é necessário realizar a limpeza contínua do órgão.
5. Etapa: A lavagem pode ser realizada posteriormente, quando a quantidade de debris estiver menor e houver menor risco de deslocar material para regiões mais profundas.
6. Etapa: Na ausência de infecção uterina, administra se ecbólico no primeiro dia e inicia se a lavagem do útero no segundo dia.

Febre direciona a investigação infecciosa

Na investigação de um processo infeccioso na égua, a primeira conduta é realizar a avaliação física do animal para verificar a presença de febre. Depois, deve se determinar se existe infecção. Quando há infecção, o tratamento precisa ser direcionado ao processo infeccioso.

A escolha do antibiótico depende da avaliação clínica e, idealmente, de exame que permita identificar a sensibilidade do agente. O atraso para obtenção de resultados ou para recebimento do medicamento pode ser de pelo menos uma semana; enquanto se aguarda a definição terapêutica, são necessárias medidas de suporte.

Infecção febril exige tratamento sistêmico

Todo processo infeccioso exige avaliação sistêmica, e a presença de febre indica necessidade de tratamento sistêmico. Na ausência de febre, pode se restringir inicialmente a intervenção ao útero, conforme a avaliação clínica.

Antibióticos administrados por via sistêmica não são eficazes no útero caso não apresentem tropismo pelo endométrio. As tetraciclinas, como a oxitetraciclina, possuem tropismo pela parede endometrial quando administradas por via sistêmica.

A oxitetraciclina pode alcançar o endométrio por via sistêmica, mas pode comprometer a microbiota intestinal e provocar diarreia. Nesses casos, deve se monitorar a desidratação e fornecer suporte à microbiota.

Resistência limita antibióticos intrauterinos

A penicilina por via intrauterina não é indicada quando há grande quantidade de matéria orgânica, pois pode sofrer degradação pela penicilinase. Além disso, a penicilina no útero pode atuar como um agente irritante, aumentando a resposta inflamatória para conter o processo infeccioso.

A gentamicina foi utilizada por via intramuscular e por infusão intrauterina, mas a resistência bacteriana limita sua eficácia. Sua aplicação intrauterina também pode causar uma resposta irritante na mucosa semelhante à da penicilina. No Brasil, há relatos e evidências laboratoriais de resistência bacteriana ao uso de gentamicina em éguas.

Antibióticos de primeira geração foram mencionados como alternativa com resposta satisfatória em determinados protocolos, embora o nome específico não tenha sido estabelecido no material.

Lábios finos aumentam o risco

A espessura dos lábios vulvares influencia a qualidade do fechamento. Mesmo quando a vulva parece fechada, se for estreita e tiver lábios finos, pode favorecer processos inflamatórios e infecciosos uterinos.

Além disso, éguas com lábios vulvares finos apresentam maior frequência de problemas na qualidade do períneo. Nessa conformação, pode ser necessário acompanhamento mais intenso e um maior número de intervenções para obter resposta reprodutiva satisfatória; por isso, o proprietário deve ser informado previamente sobre a possibilidade de maior trabalho.

Coleta combina temperatura e segurança

1. Etapa: Temperatura: a vagina artificial deve apresentar temperatura aproximada entre 45 °C e 55 °C.
2. Etapa: Manequim: é necessário utilizar uma égua em estro (no cio) como manequim.
3. Etapa: Estro: caso a égua não esteja em estro natural, é possível induzir o cio farmacologicamente com administração de estrógeno.
4. Etapa: Ejaculação: no manejo convencional, posiciona se a mão na base do pênis para palpar as contrações uretrais indicativas de ejaculação.
5. Etapa: Segurança: realize a coleta com atenção à posição do profissional, mantendo distância segura dos membros posteriores e evitando permanecer com o corpo excessivamente próximo ao cavalo. Movimentos bruscos do garanhão podem causar trauma mesmo quando o animal foi previamente condicionado.

Sinais acompanham a ejaculação

Durante a ejaculação, o garanhão pode apresentar contrações uretrais, expansão da glande e movimentos de sapateio com os membros posteriores. A observação desses sinais auxilia na identificação do momento da ejaculação e na condução adequada da coleta. Para segurar a vagina artificial com firmeza, o profissional deve manter uma posição que evite aproximar a cabeça ou o tronco das regiões de maior risco.